网刊加载中。。。

使用Chrome浏览器效果最佳,继续浏览,你可能不会看到最佳的展示效果,

确定继续浏览么?

复制成功,请在其他浏览器进行阅读

养精胶囊通过LncRNA H19调控StAR促进睾酮合成的实验研  PDF

  • 王丹丹 1
  • 金保方 2
  • 邢栋 1
  • 刘媛媛 1
  • 蔡滨 2
  • 邓伟民 2
  • 崔毓桂 3
  • 孙大林 2
1. 东南大学医学院(江苏 南京 210009); 2. 东南大学附属中大医院(江苏 南京 210009); 3. 南京医科大学第一附属医院(江苏 南京 210029)

最近更新:2023-02-03

  • 全文
  • 图表
  • 参考文献
  • 作者
  • 出版信息
目录contents

摘要

目的

研究养精胶囊对LncRNA H19调控StAR作用及促进睾酮合成机制。

方法

以体外MLTC-1细胞培养为模型,分别加入2 mL的培养基以及终浓度为0.01 mg/mL、0.1 mg/mL、1 mg/mL的养精胶囊水提物,并将其分别作为对照组和养精胶囊低、中、高剂量组,作用24 h。通过ELISA测定细胞T和FT浓度,通过qRT-PCR、Western Blot分别检测养精胶囊对MLTC-1中LncRNA H19 mRNA、StAR mRNA以及StAR蛋白表达的影响。

结果

养精胶囊水提物可以显著提高MLTC-1细胞上清T和FT浓度浓度,同时还可以明显促进LncRNA H19 mRNA以及StAR mRNA和蛋白的表达水平,与对照组比较有统计学差异(P<0.05)。

结论

养精胶囊可以通过LncRNA H19调控StAR,进而增加睾酮合成。

睾酮(Testosterone,T)是由睾丸和肾上腺产生的雄激素,对肌肉、骨骼、毛发以及性功能都有影响。睾酮水平降低会产生乏力、注意力不集中、抑郁、性欲低下和勃起功能障碍等症状。外源性补充睾酮是目前临床常用的治疗方法,但其不良反应多,且会降低男性精子生成和生育能[

1]。其中,游离睾酮(Free testosterone,FT)代表雄激素的活性形[2]

长链非编码RNA(Long noncoding RNAs,LncRNAs)是一类不具备蛋白翻译功能、长度超过200个核苷酸的转录本。LncRNA H19位于人类第11号染色体,全长2.3 kb。研[

3-4]发现,H19可以促进类固醇急性调节蛋白(Steroidogenic Acute Regulatory Protein,StAR)表达和睾酮的生成。StAR是类固醇激素生成的关键酶,可以将胆固醇从线粒体外膜转运至线粒体内[5],随后经过线粒体、内质网中相关酶的催化进而转化为睾酮。

养精胶囊是用于睾酮低下引起性功能障碍及男性不育的医院制剂。笔者团队前期研[

6-7]发现,养精胶囊能够提高StAR启动子活性从而增加睾酮合成,但关于其上游的调控机制仍不明确。由于H19在睾酮合成中具有重要作用,养精胶囊可能是通过LncRNA H19调控StAR进而发挥作用,但目前尚无相关报道。本研究旨在进一步探索养精胶囊对LncRNA H19表达的影响,探讨其促进睾酮合成的机制,具有重要意义。

1 资料及方法

1.1 细胞株与细胞培养

小鼠间质细胞(Leydig细胞)系MLTC-1,购于上海中国科学院细胞库,用RPMI-1640培养基(凯基生物,KGM31800-500),加入10%胎牛血清(ScienCell,0500)配成完全培养基,培养于37 ℃、5% CO2培养箱。

1.2 实验药物

养精胶囊(由淫羊藿、熟地黄、紫河车、沙苑子、黄精、牡蛎、当归、黄芪、王不留行、水蛭、荔枝核按1:1:1:1:2:2:1:2:2:1:1组成)来自南京军区总医院制剂科〔院临(2004)第01002号〕,其水提物提取方法见参考文[

7]。实验时用RPMI-1640培养基按比例稀释为低、中、高3种浓度梯度,分别相当于生药量0.01 mg/mL、0.1 mg/mL、1 mg/mL。

1.3 主要试剂

0.25%胰蛋白酶-EDTA(Gibco,2186976);磷酸盐缓冲液(Servicebio,G4202-500ML);RNA快速提取试剂盒(ES Science,RN001);焦碳酸二乙酯水(Beytime,R0021);PrimeScript™ RT Master Mix(Takara,RR036A);TB Green® Premix Ex Taq™(Takara,RR420A);RIPA裂解液(Thermo,#89900);蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物(Thermo,VB298680);BCA蛋白浓度测定试剂盒(Beytime,P0010);Laemmli样品缓冲液(Bio-rad,#161037);SDS-PAGE凝胶配制试剂盒(Beytime,P0012A);PageRuler™ Prestained Protein Ladder,10 to 180 kDa(Thermo,26616);StAR Polyclonal antibody(Proteintech,12225-1-AP);β-actin抗体(Proteintech,20536-1-AP);山羊抗兔IgG辣根过氧化物酶标记(Abcam,ab7090);通用型抗体稀释液(新赛美,WB500D);超敏化学发光检测试剂盒(US EVERBRIGHT INC,S6009);小鼠睾酮ELISA试剂盒(上海纪宁,A00550);小鼠游离睾酮ELISA试剂盒(上海纪宁,JN17549-S)。

1.4 实验仪器

超净台;培养箱;台式冷冻离心机(Eppendorf AG,5404);核酸蛋白测定仪(Eppendorf AG,6132);PCR仪(applied biosystems,9902);StepOnePlus实时荧光定量PCR 系统(applied biosystems);酶标仪(Thermo,1510);垂直电泳系统(Bio-rad,PowerPac™ Basic);曝光机(Tanon,5200)。

1.5 药物干预及分组

6孔板内接种2×105个/孔细胞数,待细胞生长至对数期,分别加入2 mL的培养基以及终浓度为0.01 mg/mL、0.1 mg/mL、1 mg/mL的养精胶囊水提物,并将其分别作为对照组和养精胶囊低、中、高剂量组。

1.6 观察指标

1.6.1 细胞上清T和FT浓度

上药处理24 h后,胰酶消化细胞2 min,完全培养基中和,再1000 g离心20 min,取上清。采用酶联免疫吸附试验(ELISA)检测,按照ELISA试剂盒说明书操作,最后用酶标仪在450 nm波长处测定各孔的OD值,计算细胞上清中T和FT浓度。

1.6.2 mRNA相对表达量

采用实时荧光定量PCR(qRT-PCR)检测,用试剂盒提取细胞总RNA,之后用核酸蛋白测定仪测RNA浓度,随后用逆转录试剂盒合成cDNA,最后以cDNA为模板进行扩增。所用引物由南京锐真生物技术有限公司设计并合成,详见表1。根据试剂盒说明书进行加样操作,反应采用标准两步法,以2-△△CT法计算mRNA的相对表达[

8]

表1  H19、StAR、β-actin引物序列
基因名称引物名称引物序列
H19 上游引物 ACAGAAGGGCAGTCATCCA
下游引物 GAGCTGGGTAGCACCATTTC
StAR 上游引物 CGGGTGGATGGGTCAAGTTC
下游引物 GCACTTCGTCCCCGTTCTC
β-actin 上游引物 GCTACAGCTTCACCACCACAG
下游引物 GGTCTTTACGGATGTCAACGT

1.6.3 StAR蛋白水平

采用蛋白质免疫印迹(Western Blot)进行检测。胰酶消化细胞离心去上清后,加入RIPA Buffer裂解细胞,选择BCA法测定细胞蛋白浓度,确定上样量30 μg,加入2×上样缓冲液,煮蛋白制样;制备10% SDS-PAGE凝胶,上样后电泳(压缩胶80 V、分离胶120 V),随后用PVDF转膜,5%脱脂奶粉室温封闭1 h,加入StAR抗体(1:1000)、β-actin抗体(1:2000)后于4 ℃冰箱过夜,TBST洗膜后加入HRP标记的兔二抗(1:5000)室温孵育1 h,最后加显影液曝光。

1.7 数据统计

所有数据采用SPSS 20.0和GraphPad Prism 8.0.2进行统计分析。各组计量资料采用均数±标准差(x¯±s)表示。符合正态分布的两组定量数据,采用双尾t检验。P<0.05认为差异具有统计学意义。

2 结果

研究结果均为至少进行三次独立重复实验所得。

2.1 养精胶囊处理MLTC-1后细胞上清T和FT水平的变化

ELISA检测结果表明,养精胶囊高剂量组可提高MLTC-1细胞上清T浓度(见图1A)和FT浓度(见图1B),与对照组比较有统计学差异(P<0.05)。

图1  养精胶囊对MLTC-1细胞上清T和FT水平的影响

注:  A为MLTC-1上清T水平;B为MLTC-1上清FT水平;与对照组比较*P<0.05

2.2 养精胶囊处理MLTC-1细胞后StAR mRNA和蛋白水平的变化

qRT-PCR检测结果表明,养精胶囊各剂量组均能明显提高StAR的转录水平,增加StAR mRNA的表达(P<0.05,P<0.01,P<0.001),见图2A。Western Blot检测结果表明,随着养精胶囊剂量的增加,StAR蛋白的表达增加,且低、高剂量组与对照组比较有统计学差异(P<0.01),见图2B。

图2  养精胶囊对MLTC-1细胞中StAR mRNA和蛋白的影响

注:  A为StAR mRNA水平;B为StAR蛋白水平;与对照组比较*P<0.05**P<0.01***P<0.001

2.3 养精胶囊处理MLTC-1细胞后LncRNA H19 mRNA水平的变化

qRT-PCR检测结果表明,随着养精胶囊剂量的增加,H19 mRNA的表达上调,且养精胶囊中、高剂量组能够显著提高H19的转录水平,增加H19 mRNA的表达,与对照组比较有统计学差异(P<0.05),见图3

图3  养精胶囊对MLTC-1细胞中LncRNA H19 mRNA的影响

注:  与对照组比较*P<0.05

3 讨论

睾酮大部分由睾丸Leydig细胞分泌,并受下丘脑-垂体-性腺轴的负反馈调节。Leydig细胞位于生精小管之间的间质内,在垂体分泌的黄体生成素刺激下产生睾酮,进而维持男性第二性征并调节男性生殖功能。总睾酮包括游离睾酮和与蛋白质结合的睾酮,后者可与性激素结合球蛋白(sex hormone-binding globulin,SHBG)高亲和力结合,与白蛋白、皮质类固醇结合球蛋白及类黏蛋白(orosomucoid,ORM)低亲和力结合。其中,与白蛋白低亲和力结合的睾酮容易发生解离,与游离睾酮共同构成生物可利用睾酮,在雄激素依赖性靶组织中具有生物活性。未与任何血浆蛋白结合的循环睾酮部分称为游离睾酮。由于SHBG水平随着年龄的增长而增加,因此与年龄相关的游离睾酮水平下降幅度大于总睾酮水平下降幅度。研[

9]显示,游离睾酮与迟发性性腺功能减退症的相关性强于总睾酮。然而,游离睾酮目前的测定方法缺乏标准化,通过SHBG、白蛋白和总睾酮计算游离睾酮是相对准确[10]。采用ELISA测定游离睾酮,虽缺乏一定的准确性,但亦能在一定程度上说明问[11]

LncRNA H19是目前已报道的少数印迹基因之一,在进化上高度保守。胚胎发育期,H19在内胚层和中胚层组织中高度表达,出生后主要在骨骼肌、心肌、乳腺、卵巢、子宫和睾丸中表达。H19在肿瘤进展、能量代谢和机体生长发育等方面发挥重要作[

12]。近年来,多项研究报道了H19在类固醇激素合成方面的作用,发现H19内含4个microRNA Let-7的结合位点,可以像“分子海绵”一样通过结合“吸附”Let-7,抑制其功[13],进而解除翻译抑制和mRNA激活,从而促进靶基因StAR的表达和孕酮的生[14]。Chen[4]通过敲除雌性小鼠卵巢组织内H19基因,导致类固醇合成酶CYP17和睾酮的合成均显著下调,证实了H19在调控睾酮合成方面具有重要作用。

养精胶囊是基于中医“肾藏精,主生殖”理论,结合肝肾同源、精血互生的思路而设,具有益肾养精、补血活血的功效。养精胶囊由淫羊藿、熟地黄、紫河车、沙苑子、黄精、牡蛎、当归、黄芪、王不留行、水蛭等组成。其中,淫羊藿性温,味辛、甘,可补肾温阳、强筋散湿;熟地黄性温,味甘,可益精填髓、滋阴补血,两者均入肝肾经,阴阳双补,互生互化,共为君药。紫河车补肾填精、益气养血;黄精健脾补肾、气阴双补;沙苑子益肾养肝、固精明目;牡蛎潜阳补阴,重镇安神;黄芪、当归补气养血,以充化肾精,有养血生精之功,共为臣药。王不留行、水蛭和荔枝核共用以疏肝行气、活血化瘀,为佐药。全方有益肾养血活血之效,临床可用于治疗睾酮低下引起的男性不育症和勃起功能障碍。

前期临床研[

15-17]表明,养精胶囊可以显著提高人体的血清睾酮水平,改善少、弱精子症和无精子症患者的精子数量和质量。动物实[18, 19]表明,养精胶囊可促进老年鼠睾酮的分泌,提高睾丸的脏器指数,以及精囊的分泌功能,增加精液量。体外细胞实[6,7,20]结果表明,养精胶囊水提液可以通过提高Leydig细胞中StAR的启动子活性,上调其转录和蛋白质水平的表达,提高细胞上清睾酮含量。基于前期的研究基础以及H19调控类固醇合成酶和睾酮生成的作用,笔者团队进一步研究养精胶囊对H19表达的影响,进而探索其促进睾酮合成的机制,具有一定的延续性和创新性。本研究表明,养精胶囊水提物可以显著提高Leydig细胞上清中睾酮和游离睾酮的浓度,同时还可以明显促进LncRNA H19 mRNA以及StAR mRNA和蛋白的表达。基于H19在睾酮合成中的作[4],笔者团队初步认为养精胶囊是通过H19调控StAR来促进睾酮合成的,后期还需通过H19的干扰实验进一步证实。

本结果证实了补肾填精类中药复方可以调控LncRNA H19以促进Leydig细胞合成睾酮,这对于阐明补肾填精法多通路改善男性生殖功能的机制,揭示“肾藏精”的科学实质,指导临床治疗睾酮降低引起的生殖疾病,提高男性的生殖健康具有重要意义。

参考文献

1

HALPERN JA,BRANNIGAN RE.Testosterone deficiency[J].JAMA,2019,322(11):1116. [百度学术] 

2

FACONDO P,DI LODOVICO E,PEZZAIOLI LC,et al.Usefulness of routine assessment of freetestosterone for the diagnosis of functional male hypogonadism[J].Aging Male2022,25(1):65-71. [百度学术] 

3

CHEN Y,WANG J,FAN Y,et al.Absence of the long noncoding RNA H19 results in aberrant ovarian STAR and progesterone production[J].Mol Cell Endocrinol2019,490:15-20. [百度学术] 

4

CHEN Z,LIU L,XI X,et al.Aberrant H19 expression disrupts ovarian Cyp17 and testosterone production and is associated with polycystic ovary syndrome in women[J].Reprod Sci,2022,29(4):1357-1367. [百度学术] 

5

TUGAEVA KV,SLUCHANKO NN.Steroidogenic acute regulatory protein:structure,functioning,and regulation[J].Biochemistry(Moscow),2019,84(Suppl 1):233-253. [百度学术] 

6

孙大林,陈广辉,金保方,.养精胶囊通过调控StAR启动子促进睾酮合成的研究[J].中国男科学杂志,2016,30(11):25-28. [百度学术] 

7

SUN D,DONG W,JIN B,et al.Mechanisms of Yangjing capsule in leydig cell apoptosis and testosterone synthesis via promoting StAR expression[J].Biological and Pharmaceutical Bulletin,2018,41(9):1401-1405. [百度学术] 

8

LIVAK KJ,SCHMITTGEN TD.Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) Method[J].Methods,2001,25(4):402-408. [百度学术] 

9

LI H,GU Y,SHANG X,et al.Decreased testosterone secretion index and free testosterone level with multiple symptoms tor late-onset hypogonadism identification: a nationwide multicenter study with 5980 aging males in China[J].Aging(Albany NY)2020,12(24):26012-26028. [百度学术] 

10

GOLDMAN AL,BHASIN S, WU FCW,et al.A reappraisal of testosterone's binding in circulation:physiological and clinical implications[J].Endocr Rev,2017,38(4):302-324. [百度学术] 

11

王力翔黄丽莎邱 爽.雄激素替代对兔混合性干眼的治疗效果[J].中华医学杂志,2021,101(32):2525-2530. [百度学术] 

12

YOSHIMURA H,MATSUDA Y, YAMAMOTO M,et al.Expression and role of long non-coding RNA H19 in carcinogenesis[J].Front Biosci,2018,23(4):614-625. [百度学术] 

13

KALLEN AN,ZHOU XB,XU J,et al.The imprinted H19 lncRNA antagonizes let-7 microRNAs[J].Mol Cell,2013,52(1):101-112. [百度学术] 

14

MEN Y,FAN Y,SHEN Y,et al.The steroidogenic acute regulatory protein(StAR) is regulated by the H19/let-7 axis[J].Endocrinology,2017,158(2):402-409. [百度学术] 

15

张华俊.养精胶囊治疗DAZ基因缺失所致无精子症的临床价值[D].南京南京中医药大学,2010. [百度学术] 

16

金保方黄宇烽杨晓玉.养精胶囊治疗弱精子症的临床研究[J].南京中医药大学学报,2006,22(5):286-288. [百度学术] 

17

金保方黄宇烽夏欣一.养精胶囊联合锌硒宝对不育患者精子DNA完整性的影响[J].中国男科学杂志,2006,20(12):45-49. [百度学术] 

18

薛宇阳金保方叶 佳.养精胶囊对大鼠精囊分泌功能的影响研究[J].吉林中医药2011,31(4):375-376. [百度学术] 

19

金保方薛宇阳张新东.养精胶囊对老年大鼠精囊超微结构的影响[J].中华男科学杂志,2014,20(1):68-72. [百度学术] 

20

SUN D,CUI Y,JIN B,et al.Effects of the Yangjing capsule extract on steroidogenesis and apoptosis in mouse Leydig cells[J].Evid Based Complement Alternat Med,2012,2012:985457. [百度学术]